O FL6000Medidor de fluorescência de clorofilo duplo modulador

O FL6000Fluorescência de clorofilo duplo modular é a última versão atualizada do fluorescência de clorofilo duplo modular FL3500, uma poderosa ferramenta de pesquisa científica dedicada ao estudo aprofundado dos mecanismos de fotossíntese de microalgas, clorofilos ou suspensões de quistos, como algas azuis ou verdes. O instrumento tem controle de medição de dois canais, pode controlar a temperatura da amostra de medição e é equipado com luz de flip único (STF), incorporado em vários procedimentos de medição que o usuário pode modificar por conta própria, e pode realizar vários estudos aprofundados internacionais sobre a fluorescência da clorofila. Sua estrutura principal é uma cabeça de medição óptica que contém um copo de amostra padrão de suspensão, 3 conjuntos de fontes de luz LED embutidos e um detector de sinal de diodo PIN com conversão AD de 1MHz/16 bits. O ganho de conversão de AD e o tempo de crédito podem ser controlados pelo software. O detector mede o sinal fluorescente da clorofila com resolução temporal de até 4 µs (versão rápida de 1 µs).

Áreas de aplicação:

·Propriedades da fotosíntese vegetal e triagem de distúrbios metabólicos

·Detecção de coerção biológica e não biológica

·Estudo da resistência à coerção ou susceptibilidade das plantas

·Estudo do caos metabólico

·Pesquisa do Mecanismo de Trabalho do Sistema de Fotosíntese

·Estudo de estratégias de resposta fotofisiológica de plantas forçadas

amostra típica:

·Algas azuis (bactérias azuis)

·Algas verdes

·Suspensão de clorofitos

·Suspensão de Cistos

·Fragmentos vegetais

Características:

·Medição de indução de fluorescência de clorofilo integrada, medição de PAM (modulação de pulso), medição de dinâmica de fluorescência rápida OJIP, QA - dinâmica de reoxidação, conversão de estado S, extinção de fluorescência de clorofilo e outros procedimentos de medição são reconhecidos como os fluorescômetros de clorofilo mais abrangentes do mundo

·Tecnologia de modulação dupla para medição de luz modulada em duas cores, com luz fotoquímica modulada e luz fotoquímica contínua, para medição de STF (flash de rotação única), TTF (flash de rotação dupla) e MTF (flash de rotação múltipla) e tecnologia de FRR personalizada (taxa de repetição rápida)

·Versão Standard com resolução de tempo de até 4 µs, versão rápidaAté 1 µs, o fluorescimento de clorofilo com a maior resolução temporal atual

·A unidade de controle é de dois canais, o sensor de temperatura pode ser conectado para o controle de temperatura, a unidade de medição de oxigênio conectada para a medição da reação de Hill, etc.

·Sensibilidade extremamente alta, limite mínimo de detecção de 100ng Chla/L

·A luz de medição, a luz fotorizada, a cor e a intensidade da fonte de luz monoreflexiva saturada podem ser personalizadas

·Display de toque colorido para visualização de curvas de fluorescência em tempo real

Parâmetros técnicos:

·Procedimento experimental: medição do efeito induzido pela fluorescência da clorofila de Kautsky; PAM (modulação de pulso)Dinâmica de extinção fluorescentemedição; Medição dinâmica fluorescente rápida OJIP; QA – Dinâmica da Reoxidação; Transformação de estado S; Indução rápida de fluorescência de clorofilo

• Parâmetros de fluorescência:

úPAMMedição dinâmica de extinção de fluorescência: medição da curva dinâmica de extinção de fluorescência, que pode calcular F₀Fm, Fv e F.₀’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRMais de 50 parâmetros de fluorescência de clorofila;

úOJIPMedição rápida da dinâmica da fluorescência: medição da curva rápida da dinâmica da fluorescência OJIP, com cálculo de F₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀FV / F₀Fv / Fm, M0, Área, Fix Area, SM, SS, N, Phi_P₀e psi_₀O Phi_E₀O Phi_D₀Phi_Pav, ABS/RC e TR₀/ RC, e₀/ RCe DI₀/ RCmais de 20 parâmetros relevantes;

úQualidadeQA-cinética de reoxidação: medição da curva QA-cinética de reoxidação para adaptar as respectivas amplitudes (A1, A2, A3) e constantes de tempo (T1, T2, T3) da fase rápida, da fase média e da fase lenta da QA-reoxidação.

úSTeste de estado S: medição da curva de decadência de fluorescência do teste de estado S para o cálculo do Sistema de Luz Inativa II (PSII)_XNúmero de centros de reação

úIndução de Fluorescência Flash (FFL, apenas versão rápida): para cálculo adequado da área efetiva da antena, conectividade da antena, etc.

úProtocolo personalizado para a heterogeneidade da antena PSIIαcom o PSIIβAnálise, área de corte eficaz da antena PSII (sPSIIMedição de outros parâmetros (função personalizada opcional)

úQualidade– Curva dinâmica de reoxidação eEnsaio de estado SCurva de decadência fluorescente (Li，2010）

·Resolução temporal (frequência de amostragem): detector de alta sensibilidade com resolução temporal padrão de 4 µs e versão rápida de 1 µs

·Limite mínimo de detecção: versão padrão 100ng Chla / L, versão rápida 1μg Chla / L

·Unidade de controle: com tela táctil colorida para visualização em tempo real de curvas de fluorescência

·Sala de medição:

oFlash de medição: Luz vermelha laranja 623nm e luz azul 460nm, tempo de flash 2-5µs

ouFlash saturado de uma única rotação: intensidade máxima de luz 170.000 μmol (fotões) / m².s, tempo de flash de 20-50 μs

ouLuz fotoquímica contínua: intensidade luminosa máxima de 3500 µmol (fotões)/m².s

ouDetector de fluorescência: diodo fotoelétrico PIN

ouADConversor: 16bit

outubo de ensaio de amostra: área inferior 10 x 10mm, volume 4ml

• Câmara de medição personalizada (opcional): as cores da luz, do flash saturado e da luz fotoquímica (azul, azul, âmbar, etc.) e as bandas de detecção (ChlA, ChlB) podem ser personalizadas, respectivamente

• Fonte de luz infravermelho distante (opcional): para medição de F₀comprimento de onda 730 nm

·Módulo de medição de oxigênio (opcional): medição da liberação de oxigênio das algas

·Controle de temperatura (opcional): regulador de temperatura TR 6000, intervalo de temperatura 5-60 °C, precisão 0,1 °C

• Agitação eletromagnética (opcional): para misturar amostras para evitar a precipitação da amostra, pode ser ajustada manualmente ou controlada automaticamente por software

• Interface de comunicação: porta serial RS232 / USB

FluorWinSoftware: definição ou criação de esquemas experimentais, configurações de controle de fonte de luz, saída de dados, processamento analítico e exibição de gráficos

Aplicações típicas:

1. Wang Qiang, pesquisador do Instituto de Biologia Aquática da Academia de Ciências Chinesas, usou o fluorescômetro de clorofilo FL3500 (modelo anterior ao FL6000) e o sistema de liberação térmica de plantas TL para demonstrar que a pressão de nitritos afetou primeiro o lado do receptor PSII de Synechocystis sp. PCC 6803 (Zhan X, et al, 2017). O estudo aprofundado desse mecanismo de fotossíntese muitas vezes requer a combinação desses dois instrumentos.

2.O pesquisador Pan Ruang Liang, do Instituto de Ecologia e Geografia de Xinjiang da Academia de Ciências Chinesa, e seu grupo temático usaram o fluorescômetro de clorofilo FL3500 (modelo anterior ao FL6000) para realizar estudos aprofundados sobre a toxicidade de metais pesados, sais, compostos tóxicos, herbicidas, insecticidas e antibióticos em diversas substâncias perigosas para algas no ambiente. Os procedimentos de medição de fluorescência de clorofilo exclusivos do FL3500, como medição rápida de dinâmica de fluorescência OJIP de alta resolução, QA - dinâmica de reoxidação e conversão de estado S, revelam completamente os mecanismos toxicos e seus efeitos ecológicos que causam danos ao sistema de fotossíntese de algas em diferentes concentrações e tempos de processamento. Atualmente, o grupo tem publicado mais de vinte artigos de alto nível em periódicos internacionais da SCI e em periódicos nacionais usando o FL3500 (modelo anterior ao FL6000).

Origem: República Checa

Referências:

1. Manaa A, et al. 2019. Tolerância à salinidade da quinoa (Quinoa ChenopodiumWilld) como avaliado pela ultraestrutura de cloroplastos e desempenho fotosintético. Botânica Ambiental e Experimental 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. A sensibilidade do Chlamydomonas reinhardtii ao estresse do cádmio está associada à fototáxis. Ciência Ambiental: Processos e Impactos 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Mecanismos moleculares de aclimatação e adaptação da temperatura em diatomias marinhas. A revista ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Resolver a Eutroficação de Cianobactérias Nuisantes Através da Biotecnologia. Ciências Aplicadas 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Regulação da função PSII emcianotecaATCC 51142 durante um ciclo luz-escuro. Pesquisa de Fotosíntese 139(1-3): 461-473

6. Smythers A L, et al. 2019. Caracterizando o efeito do Poast sobreChlorella vulgaris (em inglês)um organismo não alvo. Químosfera 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Modulação do proteoma tilocoide em plantas de ervilha cultivadas em diferentes irradianças: perfilamento proteômico quantitativo em ummodelo de organismo auxiliado pela integração de dados transcriptômicos. O Jornal das Plantas 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Sistema de indução e relaxamento de fluorescência de clorofila para o monitoramento contínuo da capacidade fotossintética em fotobiorreatores. Fisiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulação da cinética do aumento e da decadência da fluorescência da clorofila e das mudanças de absorbância relacionadas à P700 usando um método de Monte-Carlo cinético baseado em regras. Pesquisa de Fotosíntese. DOI: 10.1007 / s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY é necessária para a prevenção de fotodanos ao fotosistema II em um mutante carente de PsbM deSinecocistesp. PCC 6803. Fotosíntese, 56(1), 200-209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Diferenças específicas da cepa nas taxas de reparação do Photosystem II em picocianobactérias correlacionam-se com diferenças nos níveis de proteína FtsH e padrões de expressão de isoformas. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Respostas transcriptômicas da cianobactéria marinhaProchlorococcusprodutos de lise viral. Microbiologia Ambiental, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. A sensibilidade do protão da antena determina a estratégia de colheita de luz fotosintética, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493